一、 概述:
我们同行都知道大鼠尾静脉注射是一件很不容易的事,因其皮厚有鳞血管深,动物凶猛难绑定。大家一致认为给大鼠尾注没有任何可投机取巧的方法,只能多练习,找手感、积累经验、熟能生巧,其实不然,初学者要想打好大鼠尾静脉注射只要掌握住这三条就能打好,一是要把动物牢固保定,二是让动物血管充分充盈,三是知道针是否进入了血管。如果这三条都做到了,那么大鼠尾注还困难吗?其实我们就是针对这三个问题研发了大鼠静脉可视尾注固定器:一、使用了李氏快装鼠筒,装鼠速度快、保定牢固、鼠位舒适,不会前窜,保证了注射时的稳定。二、使用赶压方式将鼠尾尾根部分血管中的血赶压到鼠尾的后半部分,使其血管充分充盈,方便针头的进入。三、使用特殊的黄光照射鼠尾,使鼠尾的血管显现出来,在可视的情况下使针尖刺入,做到有的放矢,不再是单凭手感的盲打,(针是否进入血管,摆动针头看血管是否跟着动就知道针是否在血管中)不再追求那种针进血管中的落空感(其实这种手感,一般短时间内很难体会出来)。这三个问题都解决了,我们将*地从尾注的烦恼中解放出来。我们这款尾注固定器针对这三个问题,经过三年的潜心研究,用新思维、新理念,精心设计制造出来了,这款小型仪器它将用新的原理和新的操作方式让使用者耳目一新。这也将成为鼠尾静脉注射道路上的一个重要里程碑。
二、主要技术指标:
李氏快装鼠筒可盛装150-450g的大鼠
装小于220g的鼠时筒内应加装内衬
10W LED 黄光灯
配带上压块释放脚踏开关
配有使鼠尾血管充盈的压块
电源适配器:输入:AC100-220V 50Hz
输出:DC 12V 2A
整机尺寸:350 * 210 * 200 mm
整机重量:3.5 Kg
三、使用方法:
(一)连接
1.接通电源:将电源适配器分别连接电源和仪器上,接通后主机面板的绿色指示灯亮。
2.连接脚踏开关:将脚踏开关插头插接在主机箱上。(注:脚踏开关不连接,上压块无法吸合)
3.连接鼠尾透视灯:将L型鼠尾托架上的灯线插头插在主机箱相应的插座上,按动前面上的黄色按钮,黄色灯应亮。
(二)装鼠
1.快速装鼠筒的使用:装鼠筒一改过去那种大鼠钻入式的装鼠方式,(大鼠钻入式的装鼠方式使用还可以,动物在不知的情况下,很容易进入,但动物经过几次后知道进入的不适感觉,再让其进入就较困难了。)快速装鼠筒是后拉尾式装鼠方式,箕型的鼠筒前端能顺利地将鼠拉入筒内,为了避免鼠在筒内滚转身体,筒内安装了腹部限位块,能有效地限制大鼠身体在筒内翻转,大鼠被拉入筒后,可用前堵头将其堵在里面,前堵头的孔是根据大鼠头骨的生理曲线设计的,能有效地控制鼠的头部,但又不影响正常的呼吸,同时还能让大鼠的前肢找到一个舒适的位置,堵头的固定位置应以动物不能自由活动但又不影响动物肺部扩张,正常呼吸为准(通过透明的有机玻璃可观察调整),注:装小于220g的鼠时筒内应加装内衬,装大于220g的鼠时应取出内衬。
2.装好鼠的筒放置于主机上面板的滑槽上,鼠筒应侧放(因静脉血管在鼠尾的两侧),定位销进入定位孔,将鼠尾通过开口的档板放置在鼠尾挤压板下板的沟槽里,按动前面的黄色按钮,黄色灯亮,观察鼠尾血管是否摆正,再按一下黄色按钮,关闭黄灯,随后将鼠尾上压块顺时针 90°压下,直到听到清脆的吸合声才可松手,此时鼠尾已被压住,按压时应缓慢加力,为让鼠尾根部的血液,有时间挤压到鼠尾的梢部,在下压的同时黄光灯自动点亮,这时可以根据黄光透射血管的情况调整黄光亮度旋钮,使血管达到最清楚(环境的亮度变化会影响血管的显现情况,建议在较暗的室内操作,应避开强光直射)。
3.托尾槽宽度的调整:由于鼠的大小不同和注射位置的不同,鼠尾的粗度、直径有较大的变化,所以应及时地调整托尾槽的宽度,托尾槽的宽度以鼠尾能放入2/3为准,这样鼠尾可以紧贴光灯,使尾静脉显示的更清楚,固定鼠尾更稳定。
4.前支脚调整:为了方便注射,静脉可视大鼠尾注固定器应有一定的倾斜度,固定器前端机脚可调整斜度,一般以机脚全部拧出为最佳使用角度,也可根据个人使用习惯或调低或加高。
5.注射位置的调整:不管使用多重的大鼠均应从鼠尾部的下1/3处进针,这样逐渐由下向上打可避免打过的针眼出现漏液现象。因使用动物的品系、大小不同,尾长度也不同,这样就需要调整注射时的位置,其方法是松开左边L型鼠尾托架调整紧固螺丝,拉动L型鼠尾托架至合适位置后旋紧即可。
6.遮光罩的使用:遮光罩是为了遮住外界的光线,造成局部变暗有利于观察血管,能更清楚地看到尾静脉血管和针头进入的情况。如果外界的光线不是很亮可以不使用遮光罩,打开放在一边,遮光罩是软性的不会影响到其他操作。
7.注射:注射使用的针头应在7号针以下,6号较为合适,过粗的针对血管损伤过大,用后止血困难。目前也有用头皮针后接1毫升注射器用的。这还是为了看回血情况来判断是否进入血管,不管用什么样的针,重要的一点是能看到血管,同时又能看到针在哪里了,这样注射就很容易了,针头进入血管后针头左右摆动一下看血管是否跟着动,这是判断进入血管的最好方法。
确定针进入血管后,踏动脚踏开关,鼠尾上压块上行逆时针转动90°打开,这时就可以将药物推入静脉,推入时应缓慢,这样可避免动物出现充血性心衰。注射完成后应用棉球按压针孔处半分钟以上,或用止血夹止血,避免皮下出血或药液回流,影响下次注射,备用鼠筒是为了提高效率轮换使用的。(如果动物样本大也可多购鼠筒)
四、注意事项:
① 鼠筒为有机玻璃制作,应避免接触酒精和各种有机溶剂,否则易出现龟裂或损坏。
② 动物在被装筒捉持时会有应激反应,粪尿过多,应及时清理上板面和鼠筒内的粪便。
③仪器不用时应及时拔掉电源,避免仪器过热损坏。
仪器不可随意拆卸,如有问题请及时与厂家联系。